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《植物组织培养实验指导》适合于综合性大学、农林院校、高职院校等生物技术、生物科学、生物工程、农学、园艺、林学等生物相关专业的实验教材，也可供植物组织培养相关研究生、教师和科研人员参考。
目录
前言
实验一玻璃器具等的清洗、烘干、包扎、灭菌
实验二培养基母液的配制
实验三培养基的配制、灭菌及分装
实验四外植体表面消毒和接种
实验五愈伤组织的诱导与增殖
实验六外植体不定芽的分化
实验七常见植物离体快繁技术
实验八茎尖脱毒技术
实验九马铃薯试管微型薯的诱导
实验十成熟胚培养
实验十一花药培养
实验十二人工种子制作
实验十三植物细胞悬浮培养技术
实验十四植物细胞生长和活力的测定
实验十五细胞微室培养技术
实验十六原生质体的分离和培养
实验十七原生质体融合
实验十八植物水培技术
实验十九植物非试管快繁技术
实验二十农杆菌介导的植物遗传转化
实验二十一转基因植株基因组DNA的提取
实验二十二转基因植株PCR鉴定
附录一植物组织培养常用培养基配方
附录二常见水培营养液配方
附录三常见植物激素单位换算
附录四常见植物激素的配制和贮存
附录五常见抗生素的配制和贮存
主要参考文献
文摘
版权页：
插图：
（4）生根苗诱导
试管苗根长2 cm以上便可考虑移栽。将试管瓶苗移出培养室后，打开瓶盖炼苗1～2 d，然后洗净琼脂移栽到营养钵或直接在田园地里炼苗。营养钵基质为泥炭：珍珠岩=6：4，田园地以精耕细作表层添加营养基质即可。炼苗15～20 d便可定植。
（5）硝酸纤维素膜酶联免疫吸附（NCM—ELISA）检测法
样品制备：
称取0.1 g脱毒试管苗叶片放于灭菌的塑料袋内，加1 ml提取缓冲液研磨叶片，室温下静置塑料袋30～40 min，直到植物汁液渗出。
点样：
1）将一张干燥的滤纸放于实验台上，将膜放于其上。
2）用加样器吸取0.1 ml上清液，滴在膜上方格的正中，依次将各样品点于膜上。
3）将膜转到一张干燥的滤纸上，干燥15～30 min。
显色：
1）加30 ml封闭液于培养皿中，将硝化纤维素膜以45°角浸入其中（避免产生气泡），室温孵育60 min。取0.1 ml SPFMV抗体，在烧杯中与30 ml抗体缓冲液混匀，准备好第一抗体溶液。
2）弃去封闭液并用TBS迅速漂洗，然后加抗体溶液于培养皿中，加盖并用封口膜或胶带密封以防蒸发，室温孵育过夜。
3）弃去第一抗体液，在30 ml T— TBS中通过恒速振荡洗去未被结合的抗体，共洗4次，每次3 min。同时用30 ml酶标抗体缓冲液稀释0.05 ml GAR IgG—AP酶标抗体，准备好酶标抗体溶液。
4）弃去T—TBS，加入酶标抗体溶液，孵育1h。
《植物组织培养实验指导》适合于综合性大学、农林院校、高职院校等生物技术、生物科学、生物工程、农学、园艺、林学等生物相关专业的实验教材，也可供植物组织培养相关研究生、教师和科研人员参考。
目录
前言
实验一玻璃器具等的清洗、烘干、包扎、灭菌
实验二培养基母液的配制
实验三培养基的配制、灭菌及分装
实验四外植体表面消毒和接种
实验五愈伤组织的诱导与增殖
实验六外植体不定芽的分化
实验七常见植物离体快繁技术
实验八茎尖脱毒技术
实验九马铃薯试管微型薯的诱导
实验十成熟胚培养
实验十一花药培养
实验十二人工种子制作
实验十三植物细胞悬浮培养技术
实验十四植物细胞生长和活力的测定
实验十五细胞微室培养技术
实验十六原生质体的分离和培养
实验十七原生质体融合
实验十八植物水培技术
实验十九植物非试管快繁技术
实验二十农杆菌介导的植物遗传转化
实验二十一转基因植株基因组DNA的提取
实验二十二转基因植株PCR鉴定
附录一植物组织培养常用培养基配方
附录二常见水培营养液配方
附录三常见植物激素单位换算
附录四常见植物激素的配制和贮存
附录五常见抗生素的配制和贮存
主要参考文献
文摘
版权页：
插图：
（4）生根苗诱导
试管苗根长2 cm以上便可考虑移栽。将试管瓶苗移出培养室后，打开瓶盖炼苗1～2 d，然后洗净琼脂移栽到营养钵或直接在田园地里炼苗。营养钵基质为泥炭：珍珠岩=6：4，田园地以精耕细作表层添加营养基质即可。炼苗15～20 d便可定植。
（5）硝酸纤维素膜酶联免疫吸附（NCM—ELISA）检测法
样品制备：
称取0.1 g脱毒试管苗叶片放于灭菌的塑料袋内，加1 ml提取缓冲液研磨叶片，室温下静置塑料袋30～40 min，直到植物汁液渗出。
点样：
1）将一张干燥的滤纸放于实验台上，将膜放于其上。
2）用加样器吸取0.1 ml上清液，滴在膜上方格的正中，依次将各样品点于膜上。
3）将膜转到一张干燥的滤纸上，干燥15～30 min。
显色：
1）加30 ml封闭液于培养皿中，将硝化纤维素膜以45°角浸入其中（避免产生气泡），室温孵育60 min。取0.1 ml SPFMV抗体，在烧杯中与30 ml抗体缓冲液混匀，准备好第一抗体溶液。
2）弃去封闭液并用TBS迅速漂洗，然后加抗体溶液于培养皿中，加盖并用封口膜或胶带密封以防蒸发，室温孵育过夜。
3）弃去第一抗体液，在30 ml T— TBS中通过恒速振荡洗去未被结合的抗体，共洗4次，每次3 min。同时用30 ml酶标抗体缓冲液稀释0.05 ml GAR IgG—AP酶标抗体，准备好酶标抗体溶液。
4）弃去T—TBS，加入酶标抗体溶液，孵育1h。
| ISBN | 9787030322135 |
|---|---|
| 出版社 | 科学出版社 |
| 作者 | 龚一富 |
| 尺寸 | 5 |